一、板栗组培过程中褐变研究初探(论文文献综述)
邢刚[1](2019)在《黄栌组培初代、继代和褐化问题研究》文中研究指明黄栌(Cotinus coggygria)作为我国北方重要的园林景观植物,是北京香山红叶景观的主体树种。近年来,由于黄栌枯萎病的发生,严重影响红叶景观安全和黄栌林健康。目前黄栌主要通过种子萌发繁殖,但发芽率低、周期长等因素制约着优良黄栌种苗的生产。尽管国内一些学者对黄栌组织培养开展了一些探索,依然存在一些关键问题如褐化、分化等技术难题没有解决,至今尚无建立黄栌组培体系。本研究以1年生黄栌嫩芽、茎尖或休眠枝室内水培抽芽为外植体开展组织培养技术探索,筛选出黄栌组培过程的初代、继代和分化最适宜的培养基配方,有效解决褐化、分化等技术难题,建立无菌培养体系,为获得黄栌抗病优良种苗提供技术支撑。主要实验结果如下:(1)在外植体的消毒处理过程中,0.1%的升汞消毒效果最好,2%次氯酸钠效果次之,1 0%过氧化氢效果最差。(2)萌芽期用0.1%升汞消毒5 min消毒效果最佳,成长期用0.1%升汞消毒10 min消毒效果最佳,休眠期的枝条不适宜直接作为外植体进行组织培养。(3)初代培养时,最适的基础培养基为WPM,1/2MS次之,MS效果最差。(4)黄栌组织培养的最适pH为5.7。(5)诱导分化的最佳培养基组合为WPM培养基+0.8 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA+0.01 g/L PVP+1 g/L 活性炭+30 g/L 蔗糖+2.5 g/L 植物凝胶。(6)在培养基当中加入0.01%PVP或是0.1 g/LVc能有效减轻褐化。
孙贺[2](2019)在《锥栗组织培养技术研究》文中指出锥栗(Castaneahenryi)是我国南方重要的木本果材兼用树种,具有良好的生态效益和经济价值。目前我国锥栗大多采用嫁接、实生播种等常规繁殖,生产周期长,无法满足锥栗苗木繁育的需求。而利用组织培养技术可周年进行工厂化生产,能够在短时间内提供大量优质锥栗种苗。本研究以锥栗种胚、茎段、叶片为外植体,采用正交实验法、单因素对比法等方法,研究了不同消毒试剂、抗褐化剂、基本培养基以及植物生长调节剂对锥栗组织培养的影响。主要研究结果如下:(1)种胚培养。酒精50 s+升汞10 min对种胚的消毒效果最好,种胚的污染率和褐化率分别为12.10%和23.33%;1.0 g/L柠檬酸对锥栗种胚的抗褐化效果最好,种胚褐化率为8.80%;种胚在不添加植物生长调节剂的培养基中成苗率最高,成苗率为80.07%;子叶块愈伤组织诱导的最适宜培养基为6-BA 2.0 mg/L+NAA 1.5 mg/L,愈伤组织诱导率为76.27%;子叶节不定芽诱导的最适宜培养基为0.1 mg/L 2,4-D,不定芽诱导率为85.67%。(2)茎段培养。酒精30 s+升汞10 min是茎段的最佳消毒处理,茎段的污染率和褐化率分别为13.43%和33.30%;1.0 g/L柠檬酸对锥栗茎段的抗褐化效果最好,茎段褐化率为14.53%;6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.5 mg/L是锥栗带芽茎段腋芽诱导的最佳激素组合,腋芽诱导率为66.67%;6-BA 1.0 mg/L+NAA 1.5 mg/L是锥栗芽苗增殖的最佳激素组合,丛生芽诱导率为57.78%,繁殖系数为4.03;6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L是锥栗芽苗壮苗伸长培养的最佳激素组合,平均苗高为3.50 cm;最适合生根的培养基为WPM+IBA 3.0 mg/L+NAA0.5mg/L,生根率为50.61%;锥栗组培苗炼苗移栽的最佳基质配比为泥炭:蛭石=1:1,移栽成活率为83.33%。(3)叶片培养。酒精30 s+升汞10 min是叶片的最佳消毒处理,叶片的污染率和褐化率分别为11.07%和29.67%;1.0 g/L柠檬酸对锥栗叶片的抗褐化效果最好,叶片褐化率为9.14%;叶片愈伤组织诱导率最高的激素组合是6-BA 1.0mg/L+2,4-D 1.0mg/L,愈伤组织诱导率为62.79%。最有利于锥栗叶片愈伤组织增殖的植物生长调节剂组合为6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L,增殖系数为5.56。
武玉婷[3](2019)在《构树高效再生体系的建立》文中提出构树(Broussonetia papyrifera(L.))为桑科植物,可制作宣纸以及高档纸张,也是畜牧业饲料中良好的天然原料,构树还有极高的药用价值,可治疗多种疾病,还可以改善生态环境,潜在的经济效益巨大。而传统的繁殖方式下构树成活率低,生长周期长,远远满足不了社会的大量需求。因此,对构树进行组织培养快速繁殖,可缩短构树育种周期,有效解决我国造纸原料紧缺、土壤盐碱化日益加重的问题,为我国造纸、医药、畜牧等众多产业提供苗木。本试验以采自呼和浩特武川县宝坤农业园区内生长旺盛的构树嫩茎作为试验材料,通过研究6-BA、NAA、TDZ、IBA、CPPU等多种植物激素对构树启动、初代、继代以及生根培养的影响和3种抗褐变剂对构树褐变的影响,建立了构树再生体系。研究结果如下:1.启动培养构树试管苗启动培养最佳培养基配方为MS+6-BA1.Omg·L-1+IBAO.1mg·L-1,试管苗分化率90.00%,平均株高2.11cm,增殖倍数为2.57。2.初代培养构树试管苗初代培养最佳培养基配方为MS+6-BA1.Omg·L-1+IBAO.2mg·L-1,试管苗平均株高2.65cm,分化率为96.67%,增殖倍数3.33。3.抗褐变研究对构树抗褐变研究结果显示,最适宜构树生长的抗褐变剂是0.1g·L ’抗坏血酸(VC),褐变率为86.67%,褐变度为2.43。4.继代培养构 树 试 管 苗 继 代 培 养 最 佳 培 养 基 配 方 为MS+IBAO.1mg·L-1+CPPU1.Omg·L-1+VCO.1g·L-1,试管苗平均株高 3.11cm,分化率100.00%,增殖倍数 4.33。5.生根培养构树生根培养最佳配方是1/2MS+NAA0.1 mg·L-1,试管苗生根率70.00%,平均生根条数2.2条,平均根长4.42cm。
孙言博[4](2019)在《海南主栽甘薯品种再生体系的优化及外植体微生物群落特征》文中提出甘薯(Ipomoea batatas)是重要的粮食、饲料、工业原料及新型能源用块根作物,菜用型甘薯产品近年来逐渐走向餐桌,其作为甘薯产业中非常重要的一环,在中国南方地区稳定发展,然而甘薯病毒病严重制约甘薯产业的发展,每年因病毒病造成的减产高达40%。利用组织培养技术,快速地生产优质无毒的种苗是甘薯产业健康可持续发展的重要保障。在甘薯组织培养中,由于次生代谢产物氧化而引起的褐变,以及微生物造成的污染是甘薯的组织培养的两大难题。植物微生物群落中的部分微生物会引起的组织或幼苗污染,尚有部分微生物对提高农林业产量和植物抗病能力有潜在利用价值。本研究以海南主栽甘薯品种心香、广薯87、川山紫、宁紫薯、薯绿一号、高系14和三角宁为原材料,首先从外植体的选择、不同消毒方案、培养基配方和防褐化剂筛选等环节入手,建立起一套适合热带地区主栽甘薯品种的脱毒快繁最优化再生体系;其次,将传统的分离培养技术与高通量测序技术相结合,全面揭示甘薯茎尖微生物群落物种组成,以期确定甘薯外植体材料携带的病原及有益微生物的身份信息。主要结论如下:1.不同部位外植体比较的结果表明,侧芽增殖率与存活率最高;在不同的外植体消毒处理中,依次用75%酒精消毒60秒,2%次氯酸钠消毒15分钟,以及0.1%氯化汞消毒15分钟的污染率最低;最佳的生根培养基配方为:MS+0.05mg/L NAA+0mg/L 6-BA+0.1 mg/L GA3;茎长生长最快的培养基配方为MS+0.1 mg/L NAA+1mg/L6-BA+0.5mg/LGA3;茎加粗生长最快的培养基配方为:MS+0.1 mg/L NAA+1.5 mg/L6-BA+0 mg/LGA3;鲜重、干重增长最快的培养基配方为:MS+0.1 mg/L NAA+1.5 mg/L6-BA+0.5 mg/LGA3。在培养基中加入5-6g/L硫代硫酸钠和1.25g/L聚乙烯吡咯烷酮(PVP)能有效地抑制外植体的褐变。2.传统平板划线法从甘薯组培污染菌中分离得到6个不同种属的真菌,其中枝孢属(Cladosporium)、镰孢属(Fusarium)和Edenia属为甘薯苗内携带的内生真菌。刺盘孢属(Colletotrichum)、平脐蠕孢属(Bipolaris)和间座壳属(Diaporthe)为污染杂菌。3.高通量测序的结果表明,甘薯茎尖的核心微生物群落物种多样性极高,检测到的真菌、细菌、古菌OTUs数分别为13423,733,和9463个。核心微生物群落中,优势的真菌包括 Fusarium、Alternaria、Cladosporium、Edenia 和 Acremonium 等,优势的细菌有Sphingomonas,Aureimonas和Curtobacterium 等,且优势真菌中 Fusarium、Cladosporium和Edenia可通过传统培养法分离甘薯组培污染杂菌得到。4.不同地区的甘薯茎尖微生物群落物种组成具有明显的差异,其中,海口地区甘薯茎尖真菌群落中优势种为Fusarium(镰刀菌属)、Edenia属和Cladosporium(枝孢属)而桥头地区为Edenia。茎尖的细菌群落中,海口地区的优势种为Rhizobium(根瘤菌属)、Methylobacterium(甲基杆菌属)和Sphingomonas(鞘脂单胞菌属),而海头和新洲地区为Pantoea。本研究创立了一套适合海南热带地区主栽甘薯品种的组培再生体系,并在此基础上全面揭示了甘薯茎尖核心微生物群落的物种身份信息,为进一步针对具体的病原微生物采取精准、有效的外植体消毒措施奠定基础;此外,本研究揭示的非病原微生物的详细物种组成,还将为甘薯后续栽培生产中有益共生微生物的高效筛选、以及科学合理利用奠定基础。
邓小梅,吴乔娜,李蕊萍,赵梦秋,林洁莹,奚如春[5](2018)在《壳斗科植物组织培养研究进展》文中研究指明壳斗科(Fagaceae)植物是北半球热带、亚热带及温带森林植被的主要建群树种,在我国分布广泛,具有重大的社会经济与生态价值。植物组织培养技术是林木优良种质繁殖及无性系化推广的主要途径之一。从组培苗再生途径、外植体选择、基本培养基及植物生长调节剂应用等方面总结了壳斗科植物组织培养研究的进展,在外植体选择中应考虑到选择的诱导途径,培养基和植物生长调节剂的选择应根据不同树种在基本培养基上的生长情况做相应调整。并探讨了其组培过程中存在的污染率高、褐化严重、增殖芽伸长、生根困难等问题及解决方法,旨在进一步推动壳斗科植物组织培养的发展。
肖小君,罗潼,王芳[6](2017)在《木本植物组织培养过程中褐变现象及控制措施的研究进展》文中研究表明褐变是组织培养过程中的一大难题,与草本植物相比,木本植物更易发生褐变。本文结合近年来的相关研究成果,对木本植物组培过程中褐变发生的机制、影响因素以及调控措施等问题进行综述,以期为今后木本植物组织培养方面的研究提供参考。
赵梦秋[7](2017)在《红锥成年优树组培快繁技术》文中研究表明红锥(Castanopsis hystrix A.DC.)为壳斗科(Fagaceae)锥属常绿乔木,是我国南方重要的亚热带阔叶林及针阔混交林造林树种之一和高效多用途的珍贵用材。本研究以红锥25个成年优株的当年生萌枝为外植体,采用组培繁殖中遗传稳定性高的丛芽发生途径,筛选最佳的腋芽诱导、增殖培养、及生根培养培养基以及培养条件,旨在建立红锥成年优树组培快繁技术,为实现红锥优树无性化推广提供技术支撑。得出以下结论:1、建立了红锥优树组培无菌系外植体采集前用40%多菌灵1000倍喷洒,每周一次,连续三次;较好的外植体采集时间为10月份(秋季)。顶芽以下第36个茎节,长为0.51.5 cm的半木质化嫩枝为合适外植体,较好的灭菌程序为1%新洁尔灭2 min+12滴吐温+0.1%升汞溶液34 min;较好的诱导培养基为WJ+6-BA1.01.5 mg/L+NAA0.1 mg/L+卡拉胶8 g/L,最高诱导率82%;不同单株诱导率有明显差异,诱导效果较好的单株编号为42B、27、29、9A。2、初步优化了红锥优树增殖培养基及培养条件较佳的增殖培养基WJ+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂粉6.0g/L,p H值5.86.2,光照强度控制在10001500 Lx,培养间温度为25±2℃。适宜的继代周期为30 d左右;不同单株增殖系数差异显着,单株编号为42B、29、27增殖苗较为健壮,增殖系数达2.78。3、初步筛选了红锥优树生根培养基及培养条件较佳的生根培养基为1/2WJ+NAA0.6 mg/L+VC20 mg/L+蔗糖15 g/L+琼脂粉6.0g/L,p H值5.86.2,温度2327℃,光照强度为20003000lx。2025 d生根率达85%,根整齐粗壮,平均根条数为2.19。4、明确了红锥不定根发生方式和部位红锥不定根为诱导型根原基发育形成,根原基源于髓射线及其周围细胞的分裂分化。根诱导培养11 d后,不定根原基发育为幼小不定根并伸出周皮之外。5、组培苗移栽技术生根苗移栽到泥炭土、珍珠岩及椰槺的体积比为3:1:1的基质中,成活率达到90%以上,苗生长状况良好。
刘杜玲,吕平会,彭少兵,杨艳,何佳林[8](2016)在《板栗愈伤组织诱导及外植体褐化研究》文中认为以‘泰山1号’板栗新梢茎段为试材,采用正交试验设计和单因素试验法,研究了不同培养基、消毒时间、外植体、激素、蔗糖含量、抗氧化剂及光照条件对愈伤组织诱导及外植体褐化的影响。结果表明:‘泰山1号’板栗愈伤组织诱导的最佳培养基是WPM培养基;用0.1%Hg Cl2消毒1315 min,外植体褐化率明显降低;以茎段(带顶芽)为外植体,蔗糖浓度为30 g·-1,愈伤组织诱导率最高;愈伤组织诱导最佳激素组合为:6-BA1.0mg·L-1+NAA0.2 mg·L-1;100 mg·L-1VC和6 g·L-1 PVP能有效抑制外植体褐化;先暗培养两周再进行光培养,可显着降低外植体褐化率。
符真珠,杜君,何松林,王利民,孟月娥[9](2016)在《酚类物质与牡丹试管苗褐变关系的初步分析》文中研究说明为探究牡丹组培褐变过程中产生主要酚酸的成份及含量,以3个牡丹品种(乌龙捧盛、太平红、凤丹白)试管苗为材料,利用液相色谱-质谱联用(LC-MS/MS)测定了3个品种在增殖过程中未褐化与褐化试管苗体内酚酸的种类和含量。结果表明:3个品种的牡丹试管苗中均含有苯甲酸、4-羟基苯甲酸、咖啡酸、没食子酸、没食子酸甲酯、莽草酸、儿茶酚、芍药苷、3-羟基-4-甲氧基苯乙酮、绿原酸10种酚酸;没食子酸、4-羟基苯甲酸、咖啡酸在褐化试管苗中的含量均低于未褐化试管苗;芍药苷、没食子酸甲酯、苯甲酸、莽草酸、儿茶酚在褐化试管苗中含量高于未褐化试管苗;3-羟基-4-甲氧基苯乙酮在褐化和未褐化试管苗中的含量存在品种间差异,在乌龙捧盛和太平红中,褐化试管苗的含量低于未褐化试管苗,而在凤丹白中褐化试管苗的含量高于未褐化试管苗。因此,没食子酸、4-羟基苯甲酸、咖啡酸、芍药苷、没食子酸甲酯、苯甲酸、莽草酸、儿茶酚、3-羟基-4-甲氧基苯乙酮9种酚酸与牡丹试管苗褐化密切相关,而绿原酸对牡丹褐变影响较小。本研究对解决牡丹试管苗的褐化问题,提高试管苗质量具有重要的指导意义。
谢志亮,吴振旺[10](2013)在《木本植物组培褐化研究进展》文中认为结合国内外的新研究进展,对木本植物组培中褐化产生的原因、影响因素及克服方法等方面进行了论述,以为更好地开展木本植物组培工作与科研提供借鉴和帮助。
二、板栗组培过程中褐变研究初探(论文开题报告)
(1)论文研究背景及目的
此处内容要求:
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例:
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
(2)本文研究方法
调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、板栗组培过程中褐变研究初探(论文提纲范文)
(1)黄栌组培初代、继代和褐化问题研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
1 引言 |
1.1 黄栌概述 |
1.1.1 黄栌基本概述 |
1.1.2 黄栌的景观学价值 |
1.2 植物组织培养简介 |
1.2.1 组织培养步骤及再生途径 |
1.2.2 影响植物组织培养的相关因子研究 |
1.2.2.1 外植体选择及消毒 |
1.2.2.2 基础培养基 |
1.2.2.3 激素 |
1.2.2.3.1 细胞分裂素 |
1.2.2.3.2 生长素 |
1.2.2.4 碳源和能源 |
1.2.2.5 影响植物组织培养的其他因素 |
1.3 漆树科组织培养研究概述 |
1.4 黄栌组织培养研究现状 |
1.4.1 黄栌外植体的选择及消毒 |
1.4.2 黄栌的初代培养研究 |
1.4.3 黄栌的继代培养研究 |
1.4.4 黄栌的生根培养研究 |
1.5 黄栌组织培养中常见的问题 |
1.5.1 外植体污染率高 |
1.5.2 黄栌组织培养褐化严重 |
1.5.2.1 褐化机理 |
1.5.2.2 褐化类型 |
1.5.2.3 影响褐化的因素 |
1.5.2.4 防止褐化的措施 |
1.5.2.5 黄栌褐化研究进展 |
1.5.3 黄栌组培苗生根和移植困难 |
1.6 研究的目的与意义 |
1.7 研究内容 |
1.7.1 外植体消毒 |
1.7.2 建立黄栌初代、继代培养体系 |
1.7.3 研究解决黄栌褐化问题 |
1.8 技术路线 |
2 黄栌外植体消毒 |
2.1 实验材料 |
2.1.1 植物材料 |
2.1.2 实验器材及仪器 |
2.1.3 主要药品及试剂配置 |
2.1.4 培养基和培养条件 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 黄栌外植体的采集及准备 |
2.2.2 黄栌外植体的消毒 |
2.2.2.1 不同消毒液对外植体消毒 |
2.2.2.2 0.1%升汞对不同时期黄栌消毒 |
2.2.3 数据处理 |
2.3 结果与分析 |
2.3.1 不同消毒液对黄栌外植体的消毒效果 |
2.3.2 0.1%升汞对不同时期黄栌外植体的消毒效果 |
2.4 讨论 |
2.4.1 不同消毒液对黄栌外植体消毒的影响 |
2.4.2 0.1%升汞对不同时期黄栌外植体消毒效果的影响 |
2.5 小结 |
3 黄栌初代、继代培养体系 |
3.1 实验材料 |
3.1.1 植物材料 |
3.1.2 实验器材及仪器 |
3.1.3 主要药品及试剂 |
3.1.4 培养基及培养条件 |
3.2 试验方法 |
3.2.1 基础培养基筛选 |
3.2.2 pH筛选 |
3.2.3 初代培养 |
3.2.4 继代培养 |
3.2.5 数据处理 |
3.3 结果与分析 |
3.3.1 不同基础培养基的培养效果 |
3.3.2 不同pH的培养效果 |
3.3.3 初代培养 |
3.3.4 继代培养 |
3.4 讨论 |
3.4.1 基础培养基对黄栌组织培养的影响 |
3.4.2 pH对黄栌组织培养的影响 |
3.4.3 不同激素配比对黄栌初代培养的影响 |
3.4.4 不同激素对黄栌继代培养的影响 |
3.5 小结 |
4 黄栌的防褐化研究 |
4.1 实验材料 |
4.1.1 植物材料 |
4.1.2 实验器材及仪器 |
4.1.3 主要药品及试剂的配置 |
4.1.4 培养基的配置及培养条件 |
4.2 试验方法 |
4.2.1 数据处理 |
4.3 结果与分析 |
4.4 讨论 |
4.5 小结 |
5 结论 |
5.1 黄栌外植体消毒最适消毒剂及不同时期黄栌外植体消毒方案 |
5.2 黄栌初代、继代最适培养条件 |
5.3 三种防褐化处理防止效果 |
参考文献 |
附录A 化学试剂的中英文缩略词表 |
个人简介 |
导师简介 |
致谢 |
(2)锥栗组织培养技术研究(论文提纲范文)
摘要 |
ABSTARCT |
1 绪论 |
1.1 锥栗的国内外研究现状 |
1.1.1 锥栗的生物学特性 |
1.1.2 国内外锥栗栽培现状 |
1.1.3 锥栗生产加工方面的研究 |
1.2 植物组织培养概述 |
1.2.1 植物组织培养基本原理 |
1.2.2 植物组织培养的历史 |
1.2.3 植物组织培养的应用 |
1.3 栗属植物组织培养的研究概况 |
1.4 目的和意义 |
1.5 本研究的技术路线 |
2 种胚、子叶块组织培养 |
2.1 试验材料 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 消毒方法的筛选 |
2.2.2 抗褐化方法的筛选 |
2.2.3 种胚和子叶组织培养 |
2.2.4 实验数据统计与分析 |
2.3 结果与分析 |
2.3.1 不同消毒方法对消毒和褐化的影响 |
2.3.2 不同抗褐化剂对种胚抗褐化效果的影响 |
2.3.3 不同培养基对种胚成苗的影响 |
2.3.4 不同培养基对子叶块愈伤组织诱导的影响 |
2.3.5 不同培养基对子叶节不定芽诱导的影响 |
2.4 结论与讨论 |
2.4.1 种胚的灭菌和抗褐化 |
2.4.2 植物激素对种胚成苗和子叶培养的影响 |
2.4.3 植物激素对子叶节不定芽诱导的影响 |
图版Ⅰ |
3 茎段组织培养 |
3.1 实验材料 |
3.2 实验方法 |
3.2.1 消毒方法的筛选 |
3.2.2 抗褐化方法的筛选 |
3.2.3 锥栗茎段腋芽诱导研究 |
3.2.4 锥栗腋芽增殖培养研究 |
3.2.5 锥栗芽苗壮苗伸长培养研究 |
3.2.6 锥栗芽苗生根培养研究 |
3.2.7 锥栗组培苗炼苗移栽 |
3.2.8 实验数据统计与分析 |
3.3 结果与分析 |
3.3.1 不同消毒方法对茎段消毒效果的影响 |
3.3.2 不同抗褐化试剂对锥栗抗褐化效果的影响 |
3.3.3 不同植物生长调节剂组合对茎段腋芽诱导的影响 |
3.3.4 不同植物生长调节剂对腋芽增殖的影响 |
3.3.5 不同培养基对丛生芽壮苗伸长培养的影响 |
3.3.6 不同培养基对芽苗生根诱导的影响 |
3.3.7 锥栗苗的炼苗和移栽 |
3.4 结论与讨论 |
3.4.1 茎段的灭菌与抗褐化 |
3.4.2 植物生长调节剂作用 |
3.4.3 组培苗的生根与移栽 |
图版Ⅱ |
4 叶片组织培养 |
4.1 实验材料与方法 |
4.1.1 实验材料 |
4.1.2 叶片消毒方法的筛选 |
4.1.3 叶片抗褐化方法的筛选 |
4.1.4 叶片愈伤组织的诱导 |
4.1.5 实验数据统计与分析 |
4.2 结果与分析 |
4.2.1 不同消毒方法的筛选 |
4.2.2 叶片抗褐化方法的筛选 |
4.2.3 不同植物生长调节剂对叶片愈伤组织诱导的影响 |
4.2.4 不同植物生长调节剂对叶片愈伤组织继代培养影响 |
4.3 讨论 |
4.3.1 叶片的消毒与抗褐化 |
4.3.2 植物生长调节剂作用 |
图版Ⅲ |
5 研究结论与创新点 |
5.1 研究结论 |
5.2 创新点 |
参考文献 |
附录 在读期间学术成果 |
致谢 |
(3)构树高效再生体系的建立(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
缩略语表 |
1 引言 |
1.1 构树概述 |
1.1.1 构树生物学特性 |
1.1.2 构树的利用价值 |
1.2 构树繁殖技术研究 |
1.3 褐变问题的研究 |
1.3.1 褐变原因 |
1.3.2 褐变控制 |
1.4 构树组织培养研究进展 |
1.5 研究目的与意义 |
2 材料与方法 |
2.1 试验材料 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 外植体处理和启动培养 |
2.2.2 初代培养 |
2.2.3 褐变控制研究 |
2.2.4 继代培养 |
2.2.5 生根培养 |
2.2.6 炼苗与移栽 |
2.3 培养条件 |
2.3.1 培养基和培养环境 |
2.4 数据分析 |
3 结果与分析 |
3.1 启动培养 |
3.2 初代培养 |
3.3 抗褐变研究 |
3.4 继代培养 |
3.4.1 细胞分裂素种类和浓度对构树的影响 |
3.4.2 生长素种类和浓度对构树的影响 |
3.4.3 CPPU和IBA组合对构树的影响 |
3.4.4 GA_3与6-BA组合对构树增殖的影响 |
3.5 生根培养 |
3.5.1 生长素种类对构树的影响 |
3.5.2 NAA浓度对构的影响 |
3.5.3 培养基对构树的影响 |
3.6 炼苗与移栽 |
4 讨论 |
4.1 启动培养 |
4.2 初代培养 |
4.3 抗褐变研究 |
4.4 继代培养 |
4.4.1 细胞分裂素种类和浓度对构树增殖的影响 |
4.4.2 生长素种类和浓度对构树增殖的影响 |
4.4.3 CPPU和IBA不同浓度组合对构树增殖的影响 |
4.4.4 不同浓度GA3与6-BA组合对构树增殖的影响 |
4.5 生根培养 |
4.5.1 生长素种类对构树生根的影响 |
4.5.2 NAA浓度对构树生根的影响 |
4.5.3 培养基对构树生根的影响 |
4.6 炼苗与移栽 |
5 结论 |
5.1 外植体处理和启动培养 |
5.2 初代培养 |
5.3 抗褐变研究 |
5.4 继代培养 |
5.5 生根培养 |
致谢 |
参考文献 |
附录 |
作者简介 |
(4)海南主栽甘薯品种再生体系的优化及外植体微生物群落特征(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
1 引言 |
1.1 甘薯概况 |
1.1.1 甘薯生物学特性 |
1.1.2 甘薯营养价值 |
1.1.3 甘薯产业发展状况与主要问题 |
1.2 植物组培快繁关健技术 |
1.2.1 外植体的取材部位 |
1.2.2 培养基中激素种类与浓度 |
1.2.3 次生代谢产物与褐变 |
1.2.4 微生物污染与外植体消毒方式 |
1.3 植物微生物群落的潜在利用价值 |
1.4 本研究主要内容与意义 |
2 材料与方法 |
2.1 实验材料 |
2.1.1 供试甘薯品种 |
2.1.2 主要仪器与试剂 |
2.1.3 实验选用的基本培养基及主要试剂 |
2.2 实验方法 |
2.2.1 不同部位外植体组培生长对比实验 |
2.2.2 外植体的消毒方法优化实验 |
2.2.3 培养基配方的优化实验 |
2.2.4 防褐化剂的筛选实验 |
2.2.5 甘薯组培过程中污染菌的分离与鉴定 |
2.2.6 高通量检测甘薯茎尖微生物群落 |
2.2.7 群落影响因子的比较 |
3 结果与分析 |
3.1 不同外植体的选取对组培的影响 |
3.2 消毒方案对存活率的影响 |
3.3 培养基配方对外植体生长的影响 |
3.4 不同防褐化剂的效果 |
3.5 平板划线法污染菌的分离鉴定 |
3.6 基于高通量检测的甘薯茎尖共生微生物多样性 |
3.6.1 物种累积曲线 |
3.6.2 真菌 |
3.6.3 细菌 |
3.6.4 古菌 |
3.7 群落影响因子 |
3.7.1 品种对真菌微生物群落的影响 |
3.7.2 品种对细菌微生物群落的影响 |
3.7.3 地点对真菌微生物群落的影响 |
3.7.4 地点对细菌微生物群落的影响 |
3.7.5 表面消毒对真菌微生物群落的影响 |
3.7.6 表面消毒对细菌微生物群落的影响 |
4 讨论 |
4.1 再生体系的优化 |
4.2 微生物群落 |
4.3 甘薯茎尖微生物群落影响因子 |
5 结论 |
展望 |
参考文献 |
致谢 |
(5)壳斗科植物组织培养研究进展(论文提纲范文)
1 外植体的选择 |
2 基本培养基 |
3 植物生长调节剂种类及浓度对初代和继代培养的影响 |
4 生根培养 |
5 存在的问题与解决方法 |
5.1 污染问题 |
5.2 褐化问题 |
6 研究展望 |
(6)木本植物组织培养过程中褐变现象及控制措施的研究进展(论文提纲范文)
1 褐变机制 |
2 影响褐变的因素 |
2.1 植物材料 |
2.1.1 外植体的种类或基因型 |
2.1.2 外植体大小及受伤害程度 |
2.1.3 外植体的生理状态及取材时期 |
2.2 植物材料的预处理方式 |
2.3 培养基 |
2.3.1 培养基的成分 |
2.3.2 培养基的状态 |
2.3.3 培养基的硬度 |
2.3.4 激素 |
2.4 培养条件 |
2.4.1 温度 |
2.4.2 光照 |
3 褐变的控制措施 |
3.1 选择适当的外植体 |
3.2 对外植体材料进行预处理 |
3.3 选择适宜的培养基和条件 |
3.4 培养基中的添加物 |
3.4.1 抗氧化剂 |
3.4.2 吸附剂 |
3.5 培养方式 |
4 结语 |
(7)红锥成年优树组培快繁技术(论文提纲范文)
摘要 |
abstract |
缩略词表(Abbreviation) |
1 前言 |
1.1 木本植物组织培养简述 |
1.2 壳斗科植物概述 |
1.2.1 基本简介和形态特征 |
1.2.2 分布范围 |
1.2.3 主要应用价值 |
1.2.4 组培繁殖技术 |
1.3 红锥概述 |
1.3.1 基本简介 |
1.3.2 分布范围 |
1.3.3 应用价值 |
1.3.4 红锥繁殖技术研究进展 |
1.4 本研究的目的与意义 |
2 材料与方法 |
2.1 实验材料 |
2.2 实验方法 |
2.2.1 外植体采集前对母株的预处理 |
2.2.2 无菌材料的获得 |
2.2.3 诱导培养 |
2.2.4 增殖培养 |
2.2.5 生根培养 |
2.2.6 组培苗的移栽及管理 |
2.2.7 试验数据处理方法 |
3 结果与分析 |
3.1 无菌材料的获得 |
3.1.1 外植体采集季节对外植体存活的影响 |
3.1.2 不同的幼嫩程度对外植体存活的影响 |
3.1.3 不同的消毒方法对外植体存活的影响 |
3.1.4 不同外植体接种长度对腋芽诱导的影响 |
3.2 腋芽诱导培养 |
3.2.1 不同基本培养基对红锥腋芽诱导的影响 |
3.2.2 不同细胞分裂素种类和浓度对芽诱导的影响 |
3.2.3 不同植物生长调节剂种类、浓度及其配比组合对芽诱导的影响 |
3.2.4 不同单株对诱导培养的影响 |
3.2.5 暗培养对芽诱导过程中褐化和生长的影响 |
3.3 增殖培养 |
3.3.1 6-BA不同浓度对红锥增殖培养的影响 |
3.3.2 红锥不同优良单株间增殖效果比较 |
3.3.3 不同继代周期对芽增殖效果的影响 |
3.4 生根培养 |
3.4.1 不同培养基对红锥生根效果的影响 |
3.4.2 不同生长素种类及浓度对红锥生根效果的影响 |
3.4.3 生根细胞学观察 |
3.5 组培苗移栽 |
4 结论与讨论 |
4.1 结论 |
4.1.1 建立了红锥无菌系 |
4.1.2 初步优化了红锥优树增殖培养基及培养条件 |
4.1.3 初步建立红锥优树生根培养基及培养条件 |
4.1.4 明确了红锥不定根发生方式和部位 |
4.1.5 组培苗移栽技术 |
4.1.6 创新点 |
4.2 讨论 |
4.2.1 外植体的污染和褐化 |
4.2.2 不同培养基和植物生长调节剂对红锥生长的影响 |
4.2.3 基因型红锥生长的影响 |
4.2.4 组培芽玻璃化现象 |
4.2.5 生根培养过程产生愈伤问题 |
致谢 |
参考文献 |
附录 |
(8)板栗愈伤组织诱导及外植体褐化研究(论文提纲范文)
1 材料和方法 |
1.1 试验材料 |
1.2 试验设计 |
1.3 试验方法 |
1.3.1 材料消毒处理 |
1.3.2 培养基筛选 |
1.3.3 外植体消毒时间比较 |
1.3.4 外植体筛选 |
1.3.5 激素配比试验 |
1.3.6 蔗糖诱导愈伤组织试验 |
1.3.7 抗氧化剂试验 |
1.3.8 光照处理试验 |
1.4 数据统计分析 |
2 结果与分析 |
2.1 培养基对外植体褐化和愈伤组织诱导的影响 |
2.2 消毒时间对外植体褐化率及存活率的影响 |
2.3 不同外植体对愈伤组织诱导的影响 |
2.4 激素种类及浓度对愈伤组织诱导的影响 |
2.5 蔗糖含量对愈伤组织诱导的影响 |
2.6 抗氧化剂对外植体褐化率的影响 |
2.7 光照条件对外植体褐化及愈伤组织诱导的影响 |
3 结论与讨论 |
(9)酚类物质与牡丹试管苗褐变关系的初步分析(论文提纲范文)
1 材料与方法 |
1. 1 试验材料 |
1. 2 试剂 |
1. 3 仪器 |
1. 4 试验方法 |
1.4.1酚酸提取 |
1.4.2色谱条件 |
1.4.3质谱条件 |
1.4.4酚酸标样配制及标准曲线制定 |
1.4.5样品含量测定 |
1. 5 数据处理 |
2 结果与分析 |
2. 1 标准曲线、仪器检测限、回收率及精密度试验 |
2. 2 牡丹未褐化试管苗与褐化试管苗酚酸含量比较 |
3 讨论 |
4 结论 |
(10)木本植物组培褐化研究进展(论文提纲范文)
1 褐化产生的原因 |
1.1 非酶促褐化 |
1.2 酶促褐化 |
2 影响褐化发生的因子 |
2.1 外植体材料 |
2.2 培养条件 |
2.3 培养基 |
3 克服外植体褐化发生的措施 |
3.1 选择适宜的外植体 |
3.2 预处理材料 |
3.3选用适宜的培养基和培养条件 |
3.4 使用防褐剂 |
3.5连续转移外植体 |
4 结语 |
四、板栗组培过程中褐变研究初探(论文参考文献)
- [1]黄栌组培初代、继代和褐化问题研究[D]. 邢刚. 北京林业大学, 2019(04)
- [2]锥栗组织培养技术研究[D]. 孙贺. 中南林业科技大学, 2019(01)
- [3]构树高效再生体系的建立[D]. 武玉婷. 内蒙古农业大学, 2019(01)
- [4]海南主栽甘薯品种再生体系的优化及外植体微生物群落特征[D]. 孙言博. 海南大学, 2019(07)
- [5]壳斗科植物组织培养研究进展[J]. 邓小梅,吴乔娜,李蕊萍,赵梦秋,林洁莹,奚如春. 南京林业大学学报(自然科学版), 2018(04)
- [6]木本植物组织培养过程中褐变现象及控制措施的研究进展[J]. 肖小君,罗潼,王芳. 江苏农业科学, 2017(16)
- [7]红锥成年优树组培快繁技术[D]. 赵梦秋. 华南农业大学, 2017(08)
- [8]板栗愈伤组织诱导及外植体褐化研究[J]. 刘杜玲,吕平会,彭少兵,杨艳,何佳林. 中南林业科技大学学报, 2016(12)
- [9]酚类物质与牡丹试管苗褐变关系的初步分析[J]. 符真珠,杜君,何松林,王利民,孟月娥. 核农学报, 2016(01)
- [10]木本植物组培褐化研究进展[J]. 谢志亮,吴振旺. 中国南方果树, 2013(05)
标签:构树论文; 黄栌论文; 微生物培养基的类型论文; 组织培养技术论文; 植物组织培养论文;